大肠杆菌表达外源蛋白，在超声破碎的时候，用含有1%triton-X-100的PBS悬浮，然后超声的效果较好，1%triton-X-100的作用还是很明显的，对其他的一些细菌同样起作用，比如链霉菌。

  细菌沉淀直接加样品1buffer，再加5ul的巯基乙醇，混匀，离心，煮沸10min，直接上样，染色脱色步骤如下:将胶放入适量的染色液微波炉里加热1min（下次适当补点醋酸即可）,将染色液换成大量的水（自来水即可）在微波炉煮10min就可以。

  在表达重组蛋白后超声波破碎细胞，采用冰浴，400w，破2s停1s，但是不一会就产生大量泡沫，影响了破碎功率，pbs和tris缓冲液都是这样，zui后都是破碎不*，而我的目的蛋白就在这些未破碎的细胞中。

  1.会产生气泡是因为你的探头位置没放好。探头一定要接近底部，约1cm（我一般是距底部0.5mm）。功率根据仪器不同会不一样，但你可以观察液面，有波动但不要太剧烈就好。

  3.变幅杆位置摆放也要注意，听声音如果不对的话就要及时作出调整。另外可以从菌浓度方面考虑。在破碎时试着加大体积,强度别超过60%.

  4.尝试超8s停8s,对有些菌体蛋白来说，你的方法很难散热，导致蛋白变性产生气泡，停顿时间稍长一些，这样的一种情况多见于包涵体形式的蛋白。

  （2）用pH7．5的Na2HPO-NaH2PO缓冲液洗涤3次，再用该缓冲液将菌体配成1：3的菌悬液．置于40mL大塑料试管内．

  （3）将大塑料试管置于冰浴中，采用超声波破碎（功率200W，1／2”探头，破碎30s，间歇30S）．

  （4）破碎液于12000r／min下高速冷冻离心30min，收集细胞碎片和上清夜．

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